間接紅血球凝集反應(簡稱間接血凝)是間接凝集反應中應用最廣的一種方法。
原理
以紅血球為載體的間接凝集反應叫做間接血凝。將抗原吸附在紅血球上用以檢測微量抗體稱為正向間接血凝,以抗體吸附于紅血球上,檢測相應的抗原,稱為反向間接血凝。
用抗原吸附紅血球,一般比較容易,但用免疫血清吸附紅血球,則困難得多,而且往往不易獲得良好的結(jié)果,因為免疫血清中的成分非常復雜。許多其他蛋白質(zhì)和非抗體活性的免疫球蛋白占據(jù)紅血球的表面,而影響血球的特異性凝集。
材料與試劑
1.紅血球
2.反應板 分聚苯乙烯塑料板和有機玻璃板(聚甲基丙烯酸甲酯),每板又有96孔和72孔兩種規(guī)格。按孔型又可分為V和U型兩種,V型具有更典型的凝集模型,U型有時比V型的血清效價高1~2孔。反應板不能煮沸消毒和浸泡于來蘇兒水中。消毒可用0.5%甲醛溶液,1%新潔爾滅及紫外線照射等。
3.稀釋棒 由合金制成。棒頭有8條溝,吸液量為0.025ml,通過火焰,使表面氧化變粗易于吸取液體。它的作用是蘸取、轉(zhuǎn)移、混合液體。為了長期保持棒頭的氧化層,每使用20次左右,應過火焰一次。
4.標準滴管 每滴0.025ml。
5.微型振蕩器
6.兔血清鹽水 作為穩(wěn)定劑,用于懸浮致敏紅血球以及稀釋供試血清。制法為:無菌采取兔血,收集血清,滅活后
7.抗原 盡可能使用高純度的抗原。
8.供試血清或其它含抗體材料 供試血清必須滅活,加9倍2.5%的紅血球懸液,
9.醛化劑 甲醛、戊二醛、丙酮醛等。
10.優(yōu)質(zhì)鞣酸
11.0.15Mol/L pH6.4PBS液,用于紅血球致敏。
12.0.15Mol/L pH7.2PBS液,用于一般稀釋液。
13.0.02%牛血清白蛋白PBS液
14.生理鹽水
紅血球的處理
1.新鮮紅血球 新鮮紅血球用阿氏液保存于
2.紅血球醛化極其優(yōu)點
(1)醛化方法:常見的醛化劑有甲醛、戊二醛和丙酮醛。
甲醛醛化過程:①將紅血球用pH7.2PBS反復洗滌4次,以除去血清蛋白以及紅血球表面的膠體物質(zhì);②按1︰8的比例取紅血球(壓積)和3%甲醛液(用pH7.2PBS稀釋,預先冷卻至
戊二醛醛化過程:①取新鮮紅血球,以生理鹽水洗滌4次;②以0.15Mol/L pH 7.2 PBS配成1%戊二醛溶液,
丙酮醛—甲醛雙醛化過程:①取新鮮紅血球,洗滌4次,配成8%的懸液;②于紅血球懸液中加等量的3%丙酮醛室溫電磁攪拌16h~18h;③洗滌5次,再配成8%的懸液;④于紅血球懸液中加等量的3%甲醛,電磁攪拌16h~18h;⑤洗滌5次,最后以pH 7.2 PBS配成10%的懸液,加1/萬硫柳汞防腐,
(3)醛化紅血球的優(yōu)點:①性質(zhì)穩(wěn)定,不影響紅血球表面的吸附能力;②重復性好,易標準化。③可較長期保存,醛化后
(4)影響醛化的因素:①紅血球的潔凈程度:由于紅血球表面殘留血漿蛋白和其它膠質(zhì),易引起自家凝集,所以一定要充分洗凈;②紅血球的濃度:醛化時應盡量使紅血球稀釋度低一些,以減少紅血球的凝集和變形;③醛化時的溫度與醛化紅血球的質(zhì)量有很大關系,一般認為最好是
表 各種雙醛化紅細胞的結(jié)果比較
雙 醛 化 |
上海第六 人民醫(yī)院 |
首都 醫(yī)院 |
國外 資料 |
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抗原滴度 |
抗原滴度 |
脈沖/min |
抗原滴度 |
脈沖/min |
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丙酮醛+甲醛 戊二醛+丙酮醛 丙酮醛+戊二醛 |
217 219 215 |
211 - - |
5107~5118 - - |
2×106 6×106 6×106 |
1684 2154 3750 |
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脈沖/min是131I標記的特異性抗體結(jié)合到細胞上的指標,脈沖數(shù)越大,結(jié)合抗體量也越多。但是從表5-1中可以看出結(jié)合量同可測出的抗原滴度是不平行的。
適當?shù)恼袷幙墒谷┗瘎┡c紅血球充分接觸,并可排除凝塊形成。但過分地振蕩,則易產(chǎn)生氣泡,引起紅血球變形。
3.紅血球鞣化 多糖、脂多糖、類脂等一些半抗原易于吸附紅血球表面,所以一般醛化處理即可。但對于許多蛋白質(zhì)抗原,由于不易吸附于紅血球表面,所以在醛化的基礎上,必須再以一定濃度的鞣酸進行處理,強化它對蛋白質(zhì)的吸附能力。
有人認為雙醛化后可不必進行鞣化。首都醫(yī)院做了“丙酮醛+甲醛+鞣化”和不加鞣化得出相同的抗原滴度。但多數(shù)意見認為醛化后仍需鞣化比較好。
(1) 鞣化過程:①將10%醛化紅血球用生理鹽水洗滌2次,再以0.15Mol/L pH7.2PBS洗滌1次,最后以PBS配成2.50%懸液;②稱取優(yōu)質(zhì)鞣酸20mg,以生理鹽水4ml配成1﹕200的濃度,于
(2)影響鞣化的因素:①鞣酸的質(zhì)量:這是很重要的,所以必須采用優(yōu)質(zhì)鞣酸。分析純的鞣酸呈面包屑狀,不呈面粉狀,有折光性;②鞣酸的濃度:濃度過高,可以出現(xiàn)紅血球的凝集現(xiàn)象;濃度過低,達不到紅血球的活化作用。醛化過的紅血球所采用的鞣酸濃度一般比新鮮紅血球高10倍。通常以1:2 000為佳;③鞣化時間:鞣化過程一般10min~15min即可完成。時間再長也不能吸附更多的抗原,提高血凝滴度。鞣化時采用的pH對吸附抗原和血凝滴度影響不大,一般采用pH7.2的PBS液。
紅血球的致敏
1.致敏抗原劑量的確定 一般而言,在一定的范圍內(nèi),抗原的濃度與試驗的敏感性呈正比,超過這個范圍,再增加抗原,敏感性不會再提高,而且過大,有時會引起非特異性凝集。當采用一種新的抗原時,必須經(jīng)過試驗,選擇適當?shù)目乖旅魸舛,即把抗原稀釋成幾個不同的濃度分別致敏紅血球。再用這些致敏紅血球分別與標準陽性血清進行試驗,與標準陽性血清呈最高滴度的陽性反應的最小抗原劑量,即為該抗原的單位計量。致敏時,根據(jù)不同的抗原,可采用2~4個單位計量進行致敏。
2.致敏方法 各種抗原的致敏方法大致相同,一般蛋白質(zhì)的致敏方法如下:
所需濃度的抗原 1 份
pH6.4PBS液 4 份
2.50%的鞣化紅血球懸液 1 份
混勻,置
3.影響紅血球致敏的因素
⑴要有高純度或高效價的抗原或抗體。
⑵被致敏抗原或抗體的適當劑量和濃度。如抗體一般以μg/ml IgG為宜?关i瘟IgG一般用80μg/ml~160μg/ml,抗口蹄疫IgG 20μg/ml~40μg/ml,抗豬水泡病IgG 130μg/ml~160μg/ml,抗豬肺疫IgG 30μg/ml ~40μg/ml,抗豬弓形體20μg/ml~40μg/ml,抗原一般用0.2mg/ml~1mg/ml。
⑶pH:除雞卵蛋白采用4.6~5.1外,其它通常采用5.6~6.4,高于7.2或低于4.6均可使紅血球發(fā)生自凝。
⑷致敏溫度:一般為
⑸致敏時間:一般采用30min為最適時間,具有良好的特異性和重復性。也有采用60min。時間過長,會造成紅血球的形態(tài)不整,反應結(jié)果紊亂等。
⑹血球濃度:一般為1%,范圍為0.5%~1.5%。
操作方法
可采用試管法、凹窩板法和微量法。前者稀釋度準確、結(jié)果清晰、終點明確。后者具有節(jié)約材料、操作方便、結(jié)果出現(xiàn)迅速等優(yōu)點。
試管法的供試材料用兔血清鹽水二倍遞減稀釋,每管0.50ml,各管加致敏血球0.05ml,充分振蕩,混勻后置室溫,紅血球完全沉下(需數(shù)小時)或過夜后判定結(jié)果。
每次試驗需做下列對照:①血清對照:最高濃度的血清+鞣酸血球;②鞣酸血球?qū)φ眨和醚妍}水+鞣酸血球;③致敏血球?qū)φ眨和醚妍}水+致敏血球;④標準陽性血清對照:稀釋已知滴度的陽性血清,加致敏血球以檢驗試驗的敏感性是否前后一致。
結(jié)果判定
++++:管底呈細密的顆粒凝集,邊緣不整齊。
+++ :全管底呈光滑的均勻片層,邊緣折疊。
++ :全管底呈光滑的均勻片層,如傘狀。
+ :管底大部分復以光滑片層,邊緣稍厚。
± :較“+”面積更小,中央有沉積的紅血球。
— :紅血球沉積在管底中央,如小圓盤或鈕扣狀。
以“++”為滴度終點。